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細(xì)胞培養(yǎng)

細(xì)胞培養(yǎng)(Cell   culture)是指在體外模擬體內(nèi)環(huán)境(無菌、適宜溫度、PH值和某些營養(yǎng)條件),使之生存、生長、一種復(fù)制和保持主要結(jié)構(gòu)和功能的方法。細(xì)胞培養(yǎng)也叫細(xì)胞克隆技術(shù),生物學(xué)上的正式術(shù)語是細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)。無論對于整個生物工程技術(shù)還是生物克隆技術(shù)之一,細(xì)胞培養(yǎng)都是必不可少的過程,細(xì)胞培養(yǎng)本身就是細(xì)胞的大規(guī)模克隆。細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)可以將一個細(xì)胞經(jīng)過大量培養(yǎng)后轉(zhuǎn)化為簡單的單細(xì)胞或分化很少的多細(xì)胞,這是克隆技術(shù)必不可少的環(huán)節(jié),細(xì)胞培養(yǎng)本身就是細(xì)胞克隆。細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)是細(xì)胞生物學(xué)研究方法中一項重要且常用的技術(shù)通過細(xì)胞培養(yǎng),可以獲得大量的細(xì)胞,可以研究細(xì)胞的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)、細(xì)胞的合成代謝、細(xì)胞生長和增殖等。

目錄

種類劃分 編輯本段

動物細(xì)胞培養(yǎng)

在所有的體外細(xì)胞培養(yǎng)中,動物細(xì)胞培養(yǎng)是最困難的。以下是它需要的特殊條件:

⑴血清:動物細(xì)胞的體外培養(yǎng)經(jīng)常需要血清。最常用的是小牛血清。血清提供生長必需因子,如激素、微量元素、礦物質(zhì)和脂肪。在這里,血清等于動物細(xì)胞體外培養(yǎng)的天然營養(yǎng)液。

⑵支持物:大多數(shù)動物細(xì)胞都有貼壁的習(xí)慣。體外培養(yǎng)常用玻璃塑料等作為支持。

⑶氣體交換:在細(xì)胞培養(yǎng)過程中要不斷調(diào)整二氧化碳和氧氣的比例,以維持所需的氣體條件。

植物細(xì)胞培養(yǎng)

⑴光照:體外培養(yǎng)的植物細(xì)胞對光照條件要求不高,因?yàn)榧?xì)胞生長所需的物質(zhì)主要由培養(yǎng)基供給。然而,光不僅與光合作用有關(guān),還與細(xì)胞分化有關(guān)例如,光周期可以調(diào)節(jié)性細(xì)胞分化和開花,因此在以獲得植株為目的的早期植物細(xì)胞培養(yǎng)過程中,光照條件尤為重要。通過植物細(xì)胞的體外培養(yǎng)獲得重要物質(zhì)如藥物的過程,其中大多數(shù)細(xì)胞在反應(yīng)器中懸浮培養(yǎng)。

⑵激素:植物細(xì)胞的分裂和生長需要植物激素的調(diào)節(jié),而促進(jìn)細(xì)胞分裂的生長素和有絲分裂素是最基本的激素。植物細(xì)胞的分裂生長分化和個體生長周期受相應(yīng)的激素調(diào)控。相對于動物細(xì)胞,植物細(xì)胞體外培養(yǎng)的激素需求原理已經(jīng)了解,其應(yīng)用技術(shù)已經(jīng)相當(dāng)成熟,已經(jīng)有一套可用的培養(yǎng)基。同時解決了植物細(xì)胞對水敏感的問題、營養(yǎng)物、激素、滲透壓、酸堿度、對微量元素的需求等。

微生物細(xì)胞培養(yǎng)

微生物多為單細(xì)胞生物,野外生存條件較為簡單。因此,人工培養(yǎng)微生物的條件比動植物細(xì)胞簡單得多。其中厭氧微生物的培養(yǎng)比好氧微生物更復(fù)雜,因?yàn)閲?yán)格厭氧需要維持二氧化碳等非氧惰性氣體的濃度,而好氧微生物只需要通過不斷攪拌提供無菌氧氣。微生物對培養(yǎng)條件的要求不如動植物細(xì)胞和玉米漿、蛋白胨、麥芽汁、酵母膏成為微生物良好的天然培養(yǎng)基。對于一些特殊微生物的營養(yǎng)需求,可以在這些天然培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上添加。

環(huán)境條件 編輯本段

環(huán)境因素

1.無菌環(huán)境

無毒和無菌是細(xì)胞體外培養(yǎng)的首要條件。在體內(nèi),解毒系統(tǒng)和免疫系統(tǒng)可以抵御微生物或其他有害物質(zhì)的入侵,但在體外培養(yǎng)過程中,細(xì)胞缺乏免疫系統(tǒng)的保護(hù),失去了對微生物的防御能力和對有害物質(zhì)的解毒能力。為了保證細(xì)胞能夠在體外生長繁殖,需要保證無菌的工作區(qū)域、良好的個人衛(wèi)生、無菌試劑培養(yǎng)基和無菌操作。

常見的微生物污染是支原體、細(xì)菌、真菌。支原體無致死毒性,可與細(xì)胞長期共存,對細(xì)胞有潛在影響,但體積小,不易鑒定,可通過地衣紅或Hoechst33342染色等方法檢測。細(xì)菌繁殖很快,可以在短時間內(nèi)放大,產(chǎn)生毒素殺死細(xì)胞。真菌種類很多,肉眼可見,漂浮在培養(yǎng)面上,可呈絲狀、管狀或樹枝狀等。

細(xì)胞培養(yǎng)細(xì)胞培養(yǎng)

2.合適的溫度

一般哺乳動物和鳥類細(xì)胞體外培養(yǎng)的適宜溫度為37 ~ 38℃,不適宜的環(huán)境溫度會影響細(xì)胞的生長。細(xì)胞對低溫的耐受性強(qiáng)于對高溫的耐受性低溫下,細(xì)胞的代謝活性和有絲分裂能力下降。如果溫度不低于0℃,細(xì)胞代謝雖受影響,但無損傷;在25 ~ 35℃時,細(xì)胞生長緩慢;但是如果在40℃下放置幾個小時,不僅不利于細(xì)胞的存活、成長甚至?xí)?dǎo)致它的死亡。

3.適宜的滲透壓

高滲溶液或低滲溶液都會導(dǎo)致細(xì)胞折疊、腫脹、破裂。因此,滲透壓是細(xì)胞體外培養(yǎng)的重要條件之一。大多數(shù)體外培養(yǎng)的細(xì)胞對滲透壓都有一定的耐受力,在實(shí)際應(yīng)用中為260~320mmol/L的滲透壓適用于大多數(shù)細(xì)胞。

4.氣體環(huán)境與pH

體外細(xì)胞培養(yǎng)需要一個理想的氣體環(huán)境,氧氣、二氧化碳是細(xì)胞生存的必要條件。氧氣參與了細(xì)胞的活動細(xì)胞存活的三羧酸循環(huán)、新陳代謝和合成提供能量;二氧化碳不僅是細(xì)胞的代謝產(chǎn)物,也是細(xì)胞生長的必需成分,還與維持培養(yǎng)基的pH值有關(guān)。大多數(shù)細(xì)胞適宜的pH值范圍通常是7.2~7.4。在開放文化中,5%二氧化碳?xì)怏w的比例合適。

營養(yǎng)條件

1.培養(yǎng)基

細(xì)胞培養(yǎng)基含有細(xì)胞生長所需的各種營養(yǎng)物質(zhì),包括碳水化合物、氨基酸、無機(jī)鹽、維生素等。根據(jù)不同細(xì)胞的營養(yǎng)需求,有許多合成培養(yǎng)基可供選擇,如EBSS、Eagle、MEM、RPMll640、DMEM等。

2.其他添加成分

除了各種合成培養(yǎng)基提供的基本營養(yǎng)成分外,還需要根據(jù)不同的細(xì)胞和不同的培養(yǎng)目的添加血清等其他成分、因子等。

血清提供細(xì)胞外基質(zhì)、胎牛血清常用作生長因子轉(zhuǎn)鐵蛋白等重要物質(zhì)。血清的比例要根據(jù)不同的細(xì)胞和不同的研究目的來確定。10%~20%血清能維持細(xì)胞的快速生長和增殖,稱為生長培養(yǎng)基;為了維持細(xì)胞的緩慢生長或永生,加2%~5%血清可以稱為維持培養(yǎng)基。但血清中也有對細(xì)胞生長繁殖有害的物質(zhì),如補(bǔ)體、免疫球蛋白和一些生長抑制因子;成分不清影響結(jié)果分析;不同動物、不同批次的血清活性差異較大,影響培養(yǎng)效果的穩(wěn)定性。

谷氨酰胺是細(xì)胞生長的重要氮源,在細(xì)胞生長和代謝過程中起著重要作用但由于谷氨酰胺不穩(wěn)定,在溶液中易降解,在4℃放置7天,可分解50左右%所以使用前要添加谷氨酰胺。

設(shè)施器材 編輯本段

設(shè)施超凈臺、恒溫培養(yǎng)箱、倒置顯微鏡液氮儲存罐電熱鼓風(fēng)干燥箱、冰柜、電子天平、恒溫水浴槽、離心機(jī)、壓力蒸汽消毒器。
器材:
一、玻璃器材
培養(yǎng)皿、滴流瓶、刻度吸管離心管培養(yǎng)瓶燒杯量筒、三角燒瓶
二、塑料器材
多孔培養(yǎng)板、培養(yǎng)皿、培養(yǎng)瓶
三、橡皮器材
橡皮制品(最好是硅制品)做各種瓶或試管的塞子、蓋子。
四、金屬器材
剪刀、鑷子、手術(shù)刀、解剖刀血管鉗、組織鑷、眼科鑷及各種型號針頭
五、其他物品
紗布、注射器和針頭

一般過程 編輯本段

一、準(zhǔn)備工作
準(zhǔn)備工作對開展細(xì)胞培養(yǎng)異常重要,工作量也較大,應(yīng)給予足夠的重視,準(zhǔn)備工作中某一環(huán)節(jié)的疏忽可導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)失敗或無法進(jìn)行。準(zhǔn)備工作的內(nèi)容包括器皿的清洗、干燥與消毒,培養(yǎng)基與其他試劑的配制、分裝及滅菌,無菌室或超凈臺的清潔與消毒,培養(yǎng)箱及其他儀器的檢查與調(diào)試,具體內(nèi)容可參閱有關(guān)文獻(xiàn)。
二、取材
在無菌環(huán)境下從機(jī)體取出某種組織細(xì)胞(視實(shí)驗(yàn)?zāi)康亩ǎ?jīng)過一定的處理(如消化分散細(xì)胞、分離等)后接入培養(yǎng)器皿中,這一過程稱為取材。如是細(xì)胞株的擴(kuò)大培養(yǎng)則無取材這一過程。機(jī)體取出的組織細(xì)胞的首次培養(yǎng)稱為原代培養(yǎng)。理論上講各種動物和人體內(nèi)的所有組織都可以用于培養(yǎng),實(shí)際上幼體組織(尤其是胚胎組織)比成年個體的組織容易培養(yǎng),分化程度低的組織比分化高的容易培養(yǎng),腫瘤組織比正常組織容易培養(yǎng)。取材后應(yīng)立即處理,盡快培養(yǎng),因故不能馬上培養(yǎng)時,可將組織塊切成黃豆般大的小塊,置4℃的培養(yǎng)液中保存。取組織時應(yīng)嚴(yán)格保持無菌,同時也要避免接觸其他的有害物質(zhì)。取病理組織和皮膚及消化道上皮細(xì)胞時容易帶菌,為減少污染可用抗菌素處理。由組織并分離分散細(xì)胞的方法可參閱有關(guān)文獻(xiàn)。
三、培養(yǎng)
將取得的組織細(xì)胞接入培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)板中的過程稱為培養(yǎng)。如系組織塊培養(yǎng),則直接將組織塊接入培養(yǎng)器皿底部,幾個小時后組織塊可貼牢在底部,再加入培養(yǎng)基。如系細(xì)胞培養(yǎng),一般應(yīng)在接入培養(yǎng)器皿之前進(jìn)行細(xì)胞計數(shù),按要求以一定的量(以每毫升細(xì)胞數(shù)表示)接入培養(yǎng)器皿并直接加入培養(yǎng)基。細(xì)胞進(jìn)入培養(yǎng)器皿后,立即放入培養(yǎng)箱中,使細(xì)胞盡早進(jìn)入生長狀態(tài)。正在培養(yǎng)中的細(xì)胞應(yīng)每隔一定時間觀察一次,觀察的內(nèi)容包括細(xì)胞是否生長良好,形態(tài)是否正常,有無污染,培養(yǎng)基的PH是否太酸或太堿(由酚紅指示劑指示),此外對培養(yǎng)溫度和CO2濃度也要定時檢查。一般原代培養(yǎng)進(jìn)入培養(yǎng)后有一段潛伏期(數(shù)小時到數(shù)十天不等),在潛伏期細(xì)胞一般不分裂,但可貼壁和游走。過了潛伏期后細(xì)胞進(jìn)入旺盛的分裂生長期。細(xì)胞長滿瓶底后要進(jìn)行傳代培養(yǎng),將一瓶中的細(xì)胞消化懸浮后分至兩到三瓶繼續(xù)培養(yǎng)。每傳代一次稱為“一代”。二倍體細(xì)胞一般只能傳幾十代,而轉(zhuǎn)化細(xì)胞系或細(xì)胞株則可無限地傳代下去。轉(zhuǎn)化細(xì)胞可能具有惡性性質(zhì),也可能僅有不死性(Immortality)而無惡性。培養(yǎng)正在生長中的細(xì)胞是進(jìn)行各種生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)的良好材料。
四、凍存及復(fù)蘇
為了保存細(xì)胞,特別是不易獲得的突變型細(xì)胞或細(xì)胞株,要將細(xì)胞凍存。凍存的溫度一般用液氮的溫度—-196℃,將細(xì)胞收集至凍存管中加入含保護(hù)劑(一般為二甲亞或甘油)的培養(yǎng)基,以一定的冷卻速度凍存,最終保存于液氮中。在極低的溫度下,細(xì)胞保存的時間幾乎是無限的。復(fù)蘇一般采用快融方法,即從液氮中取出凍存管后,立即放入37℃水中,使之在一分鐘內(nèi)迅速融解。然后將細(xì)胞轉(zhuǎn)入培養(yǎng)器皿中進(jìn)行培養(yǎng)。凍存過程中保護(hù)劑的選用、細(xì)胞密度、降溫速度及復(fù)蘇時溫度、融化速度等都對細(xì)胞活力有影響。

具體步驟 編輯本段

一、細(xì)胞復(fù)蘇
將凍存細(xì)胞從液氮中取出后,在37℃水浴鍋內(nèi)不斷搖動促進(jìn)其融化。移人15ml離心管中,加入10ml預(yù)熱的DMEM完全培養(yǎng)基,輕輕吹勻,離心,2000rpmX2min,棄上清液。加入10ml DMEM培養(yǎng)基清洗,棄上清液。加入10ml DMEM完全培養(yǎng)基,輕輕吹打,接種于10cm盤中,在含5%CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
二、細(xì)胞傳代
細(xì)胞密度達(dá)到80%~90%時.去培養(yǎng)基,10ml PBS清洗2次。加入3ml含0.25%EDTA的胰蛋白酶,放人細(xì)胞培養(yǎng)箱3min。加人1ml DMEM完全培養(yǎng)基終止胰酶消化,轉(zhuǎn)移至15ml離心管。加入10ml PBS清洗細(xì)胞培養(yǎng)盤,轉(zhuǎn)移至15ml離心管,2000rpmX2min,棄上清液。再加入10ml PBS(經(jīng)高壓滅菌,保存于40C),吹勻,吸取10微升進(jìn)行計數(shù),按照1×10/盤接種,在含5%CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。
三、細(xì)胞凍存
細(xì)胞密度達(dá)到80%~90%時,去培養(yǎng)基,10ml PBS清洗2次。加入3ml含0.25%EDTA的胰蛋白酶,放人細(xì)胞培養(yǎng)箱3min。加入lmlDMEM完全培養(yǎng)基終止胰酶消化,轉(zhuǎn)移至15ml離心管。加入10ml PBS清洗細(xì)胞培養(yǎng)盤,轉(zhuǎn)移至15ml離心管,2000rpmX2min,棄上清液。加入lml凍存液(90%血清,10%DMSO),放入凍存盒內(nèi)(盒內(nèi)有異丙醇,以保證溫度降低的速度),立即放入一80℃冰箱內(nèi),過夜,第二天放入液氮中,可以保存至少兩年,如不放入液氮,可以保存三個月。
凍存液的配制:70%的完全培養(yǎng)基+20%FBS+10%DMSO.DMSO要慢慢滴加,邊滴邊搖。

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